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文檔簡介
1、目的:
探討前列腺癌細胞系氬氦冷凍消融處理后高遷移率族蛋白B1(high mobilitygroup protein B1,HMGB1)的釋放規(guī)律,以及HMGB1誘導(dǎo)異體外周血來源樹突狀細胞(dendritic cell,DC)凋亡的分子機制。
材料和方法:
前列腺癌細胞系PC-3、DU-145體外培養(yǎng),氬氦冷凍消融系統(tǒng)(Endocare氬氦冷凍系統(tǒng),美國,直徑1.7mm冷凍器)凍融腫瘤細胞,收
2、集冷凍壞死細胞上清液,酶聯(lián)免疫吸附試驗(ELISA)檢測冷凍處理前后腫瘤細胞上清液中HMGB1的濃度。采集前列腺癌患者新鮮外周血(抗凝),應(yīng)用Ficoll淋巴細胞分離液,貼壁方法分離出單個核細胞(PBMC),利用重組人粒細胞-巨噬細胞集落刺激因子(rhGM-CSF)、重組人白介素4(rhIL-4)體外誘導(dǎo)并培養(yǎng),獲取幼稚DC細胞(iDC)。流式細胞儀測定腫瘤細胞冷凍壞死液干預(yù)前后的DCs表面TLR-2和TLR-4受體表達率;預(yù)先使用TL
3、R-2/TLR-4封閉抗體處理iDC,隨后與腫瘤細胞冷凍壞死液在體外適宜培養(yǎng)條件下共培養(yǎng),流式細胞術(shù)測定DCs凋亡率。
結(jié)果:
1.PC-3細胞系的ELISA結(jié)果:1×105/ml組、1×106/ml組、1×107/ml組PC-3細胞培養(yǎng)基中HMGB1濃度分別為(65.78±4.57)ng/ml、(96.73±7.64)ng/ml、(137.73±13.37) ng/ml,冷凍消融后上清液中HMGB1濃度為(
4、150.88±6.78)ng/ml、(187.3±5.69)ng/ml、(285.2±27.45)ng/ml,差異具有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.01);
2.DU-145細胞系的ELISA結(jié)果:1×105/ml組、1×106/ml組、1×107/ml組DU-145細胞培養(yǎng)基中HMGB1濃度分別為(30.44±0.25)ng/ml、(45.78±0.13)ng/ml、(66.82±0.18) ng/ml,冷凍處理后上清液中HMGB
5、1濃度上升至(58.47±0.84)ng/ml、(98.1±4.62)ng/ml、(157.59±32.89)ng/ml,差異具有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.01)。
3.流式細胞術(shù)檢測結(jié)果:iDC細胞表面低表達TLR-2、TLR-4(15.4±3.87Vs.5.17±7.22),腫瘤細胞冷凍壞死液刺激后表達率明顯升高(45.2±5.58Vs.11.48±7.55), P<0.05。
4.流式細胞術(shù)(Annexin
6、V-FITC)檢測各干預(yù)組DCs凋亡率:腫瘤細胞冷凍壞死液與DCs共培養(yǎng)前后,DC細胞凋亡率(5.25±0.46)%Vs.(73.56±0.90)%;TLR-2、TLR-4抗體封閉后,冷凍壞死細胞液誘導(dǎo)DCs凋亡率(38.5±8.61)%Vs.(56.85±7.14)%,(P<0.05)。
結(jié)論:
1.流式細胞術(shù)檢測前列腺癌細胞氬氦冷凍消融后的死亡形式,顯示大部分細胞呈碎裂壞死狀態(tài)。
2.ELI
7、SA檢測冷凍消融前后腫瘤細胞上清液中HMGB1的濃度,結(jié)果顯示:前列腺癌細胞冷凍消融處理后HMGB1大量釋放,腫瘤細胞的數(shù)量也是影響HMGB1濃度的因素。
3.流式細胞術(shù)檢測發(fā)現(xiàn),幼稚DC細胞低表達TLR-2和TLR-4受體,前列腺癌細胞冷凍壞死液可明顯促進DC細胞表面TLR-2和TLR-4受體表達率。
4.腫瘤細胞冷凍壞死液與DCs共培養(yǎng)后誘導(dǎo)DC細胞凋亡;利用TLR-2和TLR-4抗體封閉DC細胞,明顯抑
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