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文檔簡介
1、研究背景:器官移植現(xiàn)已作為治療器官功能衰竭的有效措施,然而器官移植后各種類型的移植物排斥反應(yīng)仍然是器官移植的主要障礙之一。移植排斥反應(yīng)的始動環(huán)節(jié)是機體針對同種異體抗原的T細胞活化與增殖,而協(xié)同刺激信號系統(tǒng)是T細胞活化的必要條件。隨著研究的深入人們發(fā)現(xiàn):協(xié)同刺激信號系統(tǒng)內(nèi),除存在一類能刺激細胞活化的共刺激分子外,還存在另外一類抑制細胞活化的共抑制分子?,F(xiàn)已有多種動物移植模型及臨床研究顯示:阻斷或者激活某條協(xié)同刺激通路后可明顯抑制效應(yīng)性T細
2、胞活化增殖,減少各種移植排斥反應(yīng),延長移植物生存時間。HVEM(Herpesvirus EntryMediator)/CD160為近年來新發(fā)現(xiàn)的共抑制分子配/受體,研究發(fā)現(xiàn)激活小鼠CD4+T細胞HVEM/CD160通路能顯著抑制小鼠CD4+效應(yīng)性T細胞(Effective T cells,Teffs)的活化增殖及IL-2等細胞因子的產(chǎn)生,從而延長移植心臟的存活時間。CD4+CD25+調(diào)節(jié)性T細胞(Regulatory T cells,T
3、regs)作為一群特殊的T細胞亞群,具有抑制效應(yīng)性T細胞活化、增殖及細胞因子產(chǎn)生的作用,從而參與機體免疫調(diào)節(jié)。同時,CD4+CD25+調(diào)節(jié)性T細胞表面也有大量協(xié)同刺激分子的表達。這些協(xié)同刺激分子對于Treg的發(fā)育、成熟以及免疫抑制功能密切相關(guān)。有研究認(rèn)為Treg 可能通過這些協(xié)同刺激分子而抑制效應(yīng)性T細胞活化、增殖及細胞因子的產(chǎn)生。Cai等的研究發(fā)現(xiàn)小鼠CD4+CD25+調(diào)節(jié)性T細胞表面高表達HVEM分子。在敲除HVEM基因后, CD4
4、+CD25+Treg的上述免疫抑制作用明顯減弱。上述研究提示Treg 可能通過HVEM/CD160介導(dǎo)了對Teffs的免疫抑制作用。另有研究發(fā)現(xiàn)人CD4+T細胞表面也有HVEM、CD160表達,然而它們在CD4+CD25+Tregs及CD4+CD25—Teffs的具體表達情況,以及它們對調(diào)節(jié)性T細胞免疫抑制功能的影響并未深入研究。
目的:
本實驗通過免疫磁珠分選法分選高純度人CD4+CD25+Tregs及CD
5、4+CD25—Teffs,并研究HVEM、CD160在不同CD4+T細胞亞群、不同功能狀態(tài)下的表達;同時研究HVEM/CD160通路對CD4+CD25+調(diào)節(jié)性T細胞功能基因Foxp3的表達及其免疫調(diào)節(jié)作用的影響。
方法:
1.CD4+CD25+Tregs及CD4+CD25-Teffs的分選及分選純度鑒定:
采用濃度梯度離心法,從濃縮白細胞(白膜)中提取外周血單個核細胞(PBMC)。將提取的PBM
6、C 懸液按CD4+CD25+Regulatory T cell Isolation Kit 說明,進行一次CD4+T細胞的陽性分選及兩次CD25+Tregs的陰性分選,得到CD4+CD25+Tregs及CD4+CD25-Teffs。分選的CD4+CD25+Tregs 經(jīng)破膜處理后,行胞內(nèi)Foxp3 染色及CD4、CD25表面分子染色。最后通過流式細胞分析技術(shù)分析免疫磁珠分選的CD4+CD25+Tregs的純度。
2.流式細
7、胞術(shù)檢測CD4+CD25+Tregs及CD4+CD25-Teffs不同功能狀態(tài)下HVEM/CD160表達:
將免疫磁珠法分選的CD4+CD25+Tregs及CD4+CD25-T細胞分別培養(yǎng)于U 型底96孔培養(yǎng)板內(nèi),同時加入與細胞數(shù)量相等的Dynabeads Huamn T-Activator CD3/CD28磁珠,及300單位/mL濃度的人重組IL-2作為刺激因素。于培養(yǎng)刺激第0天、3天、5天三個時間點分別對CD4+CD2
8、5+Tregs細胞的HVEM及CD4+CD25-T細胞的CD160進行胞外染色,通過流式細胞分析技術(shù)分析兩種分子在各自細胞表面的表達情況。
3.RT-PCR 檢測Treg Foxp3表達:
采用HSV1gD蛋白阻斷CD4+CD25+Tregs HVEM/CD160后,通過RT-PCR 技術(shù)檢測其Foxp3基因的表達情況。
4.3H-TdR 摻入法檢測CD4+CD25+Tregs細胞免疫抑制功能:
9、
分選的CD4+CD25+Tregs 經(jīng)不同濃度梯度的HSV1gD蛋白阻斷HVEM/CD160處理后,與等量CD4+CD25-Teffs 混合共培養(yǎng),然后行3H-TdR 摻入法檢測共培養(yǎng)體系的增殖效率:CPM值。
結(jié)果:
1.采用免疫磁珠分選法分選的CD4+CD25+Treg細胞得率較高,分選細胞存活率為:95.65±1.92%,細胞活力好。通過流式細胞分析技術(shù)對其純度進行鑒定:CD4、CD25
10、分子雙陽性細胞占分選細胞總數(shù)的91.23%;而CD4、CD25、Foxp3 三陽性細胞,即是CD4+CD25+Foxp3+Treg 占分選細胞總數(shù)的70.55%。
2.HVEM在初始Treg呈中度表達,且隨著Treg的活化,其表面HVEM分子表達率上調(diào),與活化前比較差異具有統(tǒng)計學(xué)意義(p<0.05);其配體CD160分子在初始CD4+CD25-T細胞呈低表達狀態(tài),且隨著CD4+CD25-T細胞的活化其表達CD160升高,與
11、活化前比較差異具有統(tǒng)計學(xué)意義(p<0.05)。
3.實時熒光定量PCR 結(jié)果顯示:經(jīng)HSV1gD蛋白阻斷HVEM—CD160通路后Treg的Foxp3基因表達率降低,與空白對照組比較,差異具有統(tǒng)計學(xué)意義(p<0.01)。
4.3H-TdR 摻入實驗結(jié)果顯示:免疫磁珠分選的CD4+CD25+Treg 經(jīng)不同濃度的gD蛋白處理,阻斷HVEM—CD160通路后其免疫抑制作用明顯降低,處理組細胞增殖明顯高于空白對照組
12、,差異具有統(tǒng)計學(xué)意義(p<0.05),且細胞增殖程度呈濃度依賴性升高。
結(jié)論:
1.HVEM分子表達于Treg表面,而其配體CD160分子表達于Teff。隨著兩種細胞的活化,兩種分子各自表達上調(diào)。
2.Treg表面表達的HVEM分子與Teff表達的CD160結(jié)合后可上調(diào)Treg Foxp3基因的表達。
3.Treg通過表達的HVEM作用于表達CD160的Teff。其可能作為Treg
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