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文檔簡介
1、1、長效HSA/GH融合蛋白的優(yōu)化設(shè)計(jì)
目前臨床使用的部分蛋白/多肽類藥物由于分子量較小,在人體內(nèi)的半衰期短,須頻繁注射以維持藥效,從而限制了其臨床應(yīng)用,如本文研究的人生長激素(humangrowth hormone,hGH)、人甲狀旁腺激素PTH(1-34)(human parathyroid hormone1-34)。人血清白蛋白(HSA)融合技術(shù)是延長蛋白/多肽類藥物半衰期的一種簡便、靈活的技術(shù),也是目前國內(nèi)外生物制藥研
2、究的熱點(diǎn)。在利用HSA融合目的蛋白實(shí)現(xiàn)長效的技術(shù)研究中,仍有一些基礎(chǔ)問題需要解決。如目前所有報(bào)道的HSA融合蛋白的體外生物學(xué)活性均有不同程度的降低,說明了HSA對所融合的蛋白/多肽的活性位點(diǎn)的干擾。另外,有報(bào)道指出,HSA也有可能會(huì)影響所融合蛋白的正確折疊或者糖基化位點(diǎn)的暴露程度,導(dǎo)致重組表達(dá)的融合蛋白產(chǎn)物不均一。因此,在HSA融合蛋白的開發(fā)中有必要考察不同融合方向,連接肽的有無和長短對融合蛋白活性、穩(wěn)定性的影響,綜合考慮各種因素,從而
3、選擇一種最優(yōu)選的融合方式。本文著重研究了連接肽的引入和長短對HSA/GH融合蛋白的體外生物學(xué)活性和穩(wěn)定性影響,為HSA/GH融合蛋白的開發(fā)提供了一種優(yōu)選設(shè)計(jì),同時(shí)也為其他HSA融合蛋白的設(shè)計(jì)提供了參考。
2、HSA/GH融合蛋白免疫檢測方法的建立
目前市場上只有檢測GH或者HSA的ELISA試劑盒,沒有專門針對HSA/GH融合蛋白的ELISA試劑盒。而在藥代動(dòng)力學(xué)研究中,要檢測到完整的HSA/GH分子才能準(zhǔn)確反映HS
4、A/GH在體內(nèi)的代謝動(dòng)力學(xué)過程。本文建立了一種能夠檢測HSA/GH融合蛋白完整分子的雙抗夾心ELISA,其檢測范圍在2.156~69ng/ml,初步應(yīng)用于大鼠體內(nèi)的藥代動(dòng)力學(xué)研究,為HSA/GH融合蛋白進(jìn)一步的臨床前開發(fā)奠定了基礎(chǔ)。
3、HSA融合蛋白的高效畢赤酵母表達(dá)系統(tǒng)的建立
酵母表達(dá)系統(tǒng)兼具了原核表達(dá)系統(tǒng)表達(dá)周期短、表達(dá)量較高、易于工業(yè)化高密度培養(yǎng)的優(yōu)點(diǎn)以及真核表達(dá)系統(tǒng)對外源蛋白進(jìn)行糖基化、磷酸化等翻譯后修飾的
5、特點(diǎn),被公認(rèn)為是一種表達(dá)大規(guī)模蛋白的強(qiáng)有力工具。研究也表明,酵母表達(dá)系統(tǒng)是目前用于HSA重組表達(dá)最高效、最經(jīng)濟(jì)的一種表達(dá)系統(tǒng),利用畢赤酵母表達(dá)一系列HSA融合蛋白具有潛在優(yōu)勢,因此本課題組將畢赤酵母作為首選表達(dá)系統(tǒng),應(yīng)用于一系列HSA融合蛋白的研究。但在表達(dá)一系列HSA融合蛋白時(shí)發(fā)現(xiàn),未經(jīng)優(yōu)化的畢赤酵母表達(dá)系統(tǒng)主要存在兩大缺陷,影響了HSA融合蛋白的高效重組表達(dá),嚴(yán)重制約了HSA融合蛋白的臨床前研究進(jìn)程:1)分泌表達(dá)過程中的降解問題;2
6、)分泌表達(dá)效率普遍較低,使得發(fā)酵表達(dá)量的提升也非常有限。因此有必要對畢赤酵母表達(dá)系統(tǒng)進(jìn)行優(yōu)化,實(shí)現(xiàn)HSA融合蛋白的高效表達(dá)。
3.1構(gòu)建蛋白酶缺陷型宿主改善HSA融合蛋白的降解
一系列HSA融合蛋白在畢赤酵母中表達(dá)時(shí)都存在不同程度的降解,若與HSA進(jìn)行融合的蛋白/多肽對蛋白酶敏感,重組表達(dá)時(shí)的降解問題會(huì)更嚴(yán)重,更復(fù)雜。由于降解條帶一般與完整的HSA融合蛋白性質(zhì)相近,影響了后續(xù)重組蛋白的純化制備。
本文以其中
7、一個(gè)典型的易降解蛋白——人血清白蛋白-人甲狀旁腺激素(1-34)融合蛋白[HSA/PTH(1-34)]為研究對象,首先通過Western Blot、N端氨基酸測序以及質(zhì)譜分析證明了表達(dá)產(chǎn)物中完整蛋白的存在,并對降解產(chǎn)物進(jìn)行了表征。
文獻(xiàn)報(bào)道指出,PTH易被酵母中的一類yapsin蛋白酶降解,并且液泡蛋白酶也是導(dǎo)致外源蛋白在畢赤酵母中重組表達(dá)時(shí)發(fā)生降解的主要原因。畢赤酵母中的液泡蛋白酶已經(jīng)研究的比較清晰,并且已經(jīng)有敲除主要液泡蛋
8、白酶的商品化蛋白酶缺陷型宿主(SMD1168宿主為proteinaseA缺陷型,SMD1163為proteinaseA和proteinase B雙重缺陷型)。根據(jù)畢赤酵母基因組測序結(jié)果,畢赤酵母中的yapsin家族共存在7個(gè)成員(YPS1,YPS2,YPS3,YPS7,MKC7,YPS',YPS"),但針對這7個(gè)yapsin成員的研究目前相對較少。本文利用同源重組的方法,構(gòu)建了7個(gè)單一YPS敲除的畢赤酵母宿主。通過分析7種單一YPS缺陷
9、宿主和proteinase A,proteinase B缺陷宿主對HSA/PTH(1-34)融合蛋白降解的影響,發(fā)現(xiàn)YPS1敲除和proteinaseA敲除都有助于改善HSA/PTH(1-34)融合蛋白的降解。通過將YPS1和proteinaseA同時(shí)敲除,降解得到最大程度的改善,與野生型GS115相比,完整蛋白的產(chǎn)率從30%提高到了80%。
3.2多拷貝HSA融合基因整合與分子伴侶共表達(dá)相結(jié)合,提高HSA融合蛋白的表達(dá)量
10、r> 在本課題的前期研究中,以pPIC9為表達(dá)載體,在野生型或者蛋白酶缺陷型畢赤酵母宿主中實(shí)現(xiàn)了多種HSA融合蛋白的分泌表達(dá),包括:HSA/GH、HSA/PTH(1-34)、HSA/IL1 Ra、HSA/Thymosinα1等等。但同時(shí)也發(fā)現(xiàn),這些表達(dá)菌株的表達(dá)水平普遍較低(25~50mg/L),通過發(fā)酵條件優(yōu)化對表達(dá)量的提升也較為有限。這一方面極大的限制了后期純化蛋白的制備量與制備速度,制約了HSA融合蛋白的臨床前研究進(jìn)程;另一方面
11、也增加了HSA融合蛋白前期開發(fā)投入以及后續(xù)產(chǎn)業(yè)化生產(chǎn)的成本。因此,構(gòu)建HSA融合蛋白的高表達(dá)工程菌株顯得尤為重要。
本文考察了HSA融合基因拷貝數(shù)以及幾種重要的分子伴侶共表達(dá)對HSA融合蛋白表達(dá)量的影響。結(jié)果表明,通過兩種方式的結(jié)合可以使HSA融合蛋白在野生型畢赤酵母中的表達(dá)量大幅度提高,如HSA-G1-GH經(jīng)過優(yōu)化后的表達(dá)量在搖瓶水平從低于50mg/L提高到了364mg/L。該方法也可用于蛋白酶缺陷型宿主,如優(yōu)化后的HSA/
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