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文檔簡介
1、研究背景:1型糖尿病是一種體內(nèi)胰島素絕對缺乏所導(dǎo)致的以高血糖為特征的終身性疾病,其發(fā)病率正在以3-5%的速度逐年提高。目前1型糖尿病患者在全球大約有2000萬,中國至少有100萬。1型糖尿病患者需終身胰島素治療以維持生命,目前尚沒有有效的手段根治1型糖尿病,不合理的胰島素補充所導(dǎo)致的高血糖或低血糖現(xiàn)象嚴(yán)重,以致各種并發(fā)癥接踵而至,患者壽命普遍縮短。
為了有效控制血糖,防止糖尿病并發(fā)癥的發(fā)生,提高糖尿病患者的生存質(zhì)量,替代被
2、患者自身免疫系統(tǒng)破壞的胰島素分泌細(xì)胞,胰島細(xì)胞移植蓬勃興起。而胰島細(xì)胞的移植仍面臨著兩大難題:一、供體來源不足,二、免疫抑制藥物的長期使用。自體誘導(dǎo)多能干細(xì)胞(iPSCs)由于不存在倫理和免疫排斥限制,有望成為誘導(dǎo)胰島素分泌細(xì)胞的種子細(xì)胞。但是iPSCs極低的誘導(dǎo)效率極大制約了其在臨床糖尿病治療中的應(yīng)用,如何安全高效地將自體細(xì)胞轉(zhuǎn)化為iPSCs并誘導(dǎo)分化為有功能的胰島素分泌細(xì)胞成為制約這項技術(shù)發(fā)展的難點。
非肥胖型糖尿病小
3、鼠(NOD mouse)來源于ICR鼠,是Makion等于1980年通過近親交配和選擇繁殖的一組具有白內(nèi)障傾向的自身免疫性糖尿病的動物模型,病狀的特征為尿頻、多飲、高血糖、尿酸強陽性、高膽固醇血癥,是目前人類研究1型糖尿病的良好動物模型。本實驗利用反轉(zhuǎn)錄病毒將3個干細(xì)胞基因Oct4、Sox2、Klf4導(dǎo)入NOD鼠尾成纖維細(xì)胞中,將其誘導(dǎo)為NOD-iPSCs,并對其干細(xì)胞標(biāo)記的表達及全能性進行了分析鑒定。由于摒棄了原癌基因c-Myc,高了
4、安全性。采用可拆分的半透膜相隔離設(shè)計——建立一個胰島細(xì)胞和iPSCs的共培養(yǎng)體系,在化學(xué)因子誘導(dǎo)分化的基礎(chǔ)上,讓胰島細(xì)胞更為精確地模仿胰腺生存的微環(huán)境,分泌可溶性因子作用于iPSCs。研究體外胰島細(xì)胞共培養(yǎng)及化學(xué)因子聯(lián)合誘導(dǎo)是否具有更高的效率,并為之后胰島素分泌細(xì)胞的分離純化、功能檢測、移植實驗提供便利,建立優(yōu)化的技術(shù)平臺。
第一部分
目的:
1.利用三因子(Oct4、Sox2、Klf4)構(gòu)建N
5、OD小鼠誘導(dǎo)性多能干細(xì)胞系。
2.對所獲得的iPSCs進行鑒定及全能性分析,以期獲得與胚胎干細(xì)胞類似的多能干細(xì)胞。
方法:
1.制備逆轉(zhuǎn)錄病毒:包含Oct4,Sox2和Klf4三個基因的逆轉(zhuǎn)錄病毒質(zhì)粒pMXs-Oct3、pMXs-Sox2、pMXs-Klf4及參照質(zhì)粒pMXs-EGFP購自Addgene公司,使用DH5α細(xì)菌進行擴增后將4個質(zhì)粒分別轉(zhuǎn)染至逆轉(zhuǎn)錄病毒包裝細(xì)胞Plat-E,48h后收
6、集病毒上清,過濾、濃縮后用于感染鼠尾成纖維細(xì)胞。
2.分離與培養(yǎng)NOD鼠尾尖成纖維細(xì)胞(TTFs):無菌分離成年的NOD鼠尾真皮,37℃下5% CO2孵育5d,在這期間成纖維細(xì)胞從尾組織中遷移出來,消化后接種至平皿培養(yǎng)。1-3代內(nèi)的細(xì)胞用于iPSCs的誘導(dǎo)。
3.逆轉(zhuǎn)錄病毒感染TTFs及生成iPSCs:將收集的病毒上清感染生長良好的TTFs,約1周時可首次看到iPS克隆,20d左右iPS克隆可長至足夠大被挑取
7、擴大培養(yǎng)。
4.鑒定iPSCs的生物學(xué)特性:通過鏡下觀察、堿性磷酸酶染色、反轉(zhuǎn)錄PCR(RT-PCR)、免疫熒光實驗及畸胎瘤形成實驗等對iPSCs形態(tài)、多能性基因表達情況、干細(xì)胞表面標(biāo)記及全能性等進行鑒定分析。
結(jié)果:
1.制備逆轉(zhuǎn)錄病毒:逆轉(zhuǎn)錄病毒質(zhì)粒轉(zhuǎn)染Plat-E細(xì)胞48h后,熒光顯微鏡下可見綠色熒光表達(pMXs-EGFP),轉(zhuǎn)染效率約在50-70%之間,細(xì)胞狀態(tài)良好。
2
8、.分離與培養(yǎng)NOD-TTFs:TTFs原代培養(yǎng)在接種后3-4h貼壁,細(xì)胞呈長梭形、多邊形或不規(guī)則形,中間1-2個圓形或卵圓形的核,原代TTFs雜細(xì)胞較多,隨著傳代次數(shù)的增多,其純度增高,一般第二代后即可得到較純的細(xì)胞。
3.逆轉(zhuǎn)錄病毒感染TTFs及生成iPSCs:包含三個干細(xì)胞基因的逆轉(zhuǎn)錄病毒感染TTFs后大約一周左右可以在鏡下首次看到iPS克隆,而后克隆繼續(xù)增殖,12d左右形成肉眼可見的iPS集落,16-20d時克隆長至
9、足夠大,此時進行挑取、消化、接種至飼細(xì)胞上傳代培養(yǎng)。
4.鑒定NOD-iPSCs的生物學(xué)特性:從TTFs獲得的iPSCs鏡下觀察呈典型的克隆狀生長,圓形或橢圓形,與飼細(xì)胞分界清楚;RT-PCR、堿性磷酸酶染色及免疫熒光檢測iPSCs高表達胚胎干細(xì)胞相關(guān)基因及蛋白;種植在免疫缺陷鼠體內(nèi)能夠形成向內(nèi)中外三個胚層分化的畸胎瘤,表明iPSCs具有多潛能性。未感染逆轉(zhuǎn)錄病毒的TTFs不具有上述胚胎干細(xì)胞(embryonicstemc
10、ell,ESCs)相關(guān)的細(xì)胞特性。
結(jié)論:
1.通過轉(zhuǎn)導(dǎo)三個重編程因子(Oct4、Sox2、Klf4)可以將NOD鼠尾尖成纖維細(xì)胞誘導(dǎo)為多能干細(xì)胞,即NOD-iPSCs。
2.NOD-iPSCs具有類似胚胎干細(xì)胞的生物學(xué)特性,并能維持長期多次傳代,表明初步建立了NOD-iPS細(xì)胞系。
第二部分
目的:
1.體外將NOD-iPSCs誘導(dǎo)分化為胰島素分泌細(xì)胞
11、。
2.采用大鼠胰島細(xì)胞共培養(yǎng)及化學(xué)因子聯(lián)合誘導(dǎo)方法,建立一種更為安全、高效的誘導(dǎo)體系。
方法:
1.獲取共培養(yǎng)所需大鼠胰島細(xì)胞:6只SD大鼠隔夜禁食,麻醉后開腹后沿大鼠膽總管內(nèi)逆行注入預(yù)冷的0.5mg/ml膠原酶p溶液8~10ml,使胰腺膨脹,迅速摘取整個胰腺。用Ficoll非連續(xù)密度梯度離心法純化大鼠胰島細(xì)胞。將獲得的大鼠胰島細(xì)胞種植于培養(yǎng)皿中,1640培養(yǎng)基+10%澳洲胎牛血清+2%雙抗培
12、養(yǎng)。用雙硫腙(Dithizone,DTZ)染色檢測胰島的純度,吖啶橙(AcridineOrange,AO)-碘化丙啶(Propidium Iodide,PI)染色檢測胰島的活率。
2.誘導(dǎo)iPSCs分化為胰島素分泌細(xì)胞:
實驗分組:實驗組:NOD鼠iPSCs+化學(xué)因子培養(yǎng)基+大鼠胰島細(xì)胞共培養(yǎng)對照組1:NOD鼠iPSCs+化學(xué)因子培養(yǎng)基對照組2:NOD鼠iPSCs+胰島細(xì)胞共培養(yǎng)+FP培養(yǎng)基培養(yǎng),不加任何誘導(dǎo)
13、劑。
對照組3:單獨培養(yǎng)NOD鼠iPSCs,不加任何誘導(dǎo)劑化學(xué)因子誘導(dǎo)法:
第一階段:將iPSCs種植在Matrigel基質(zhì)膠(1∶50)包被的培養(yǎng)皿中,Dfl2培養(yǎng)基(補充0.2% BSA,0.5×N2和0.5×B27)培養(yǎng)4天,同時加入誘導(dǎo)因子100 ng/ml activinA和1μM wortmannin將其誘導(dǎo)成內(nèi)胚層細(xì)胞。
第二階段:第4天更換培養(yǎng)基為F12/IMDM(1∶1,補充0
14、.5% BSA,0.5% ITS和0.5×B27),并加入誘導(dǎo)因子2μM RA、20 ng/ml FGF7及50 ng/ml NOGGIN培養(yǎng)4天,將其誘導(dǎo)為胰島內(nèi)分泌細(xì)胞。
第三階段:第8天更換培養(yǎng)基為高糖DMEM(補充0.5% BSA,1% ITS和1×N2),并加入50 ng/ml EGF培養(yǎng)5天,促進胰島祖細(xì)胞/胰島內(nèi)分泌細(xì)胞擴增。
第四階段:第13天更換培養(yǎng)基為DF12,并加入1% ITS、10ng
15、/ml bFGF、10 mM nicotinamide、50 ng/ml Exendin-4和10 ng/ml BMP2培養(yǎng)7-9天,促進胰腺內(nèi)分泌細(xì)胞成熟。
共培養(yǎng)方法:將iPSCs與大鼠胰島細(xì)胞以半透膜相隔離,使兩種細(xì)胞互不接觸,培養(yǎng)液可以相互交流,大鼠細(xì)胞分泌的可溶性因子可以自由通過半透膜。將iPSCs接種于12孔板底層,培養(yǎng),孔板中置入transwell insert,在孔板上接種β細(xì)胞,insert直徑選0.4μ
16、m,保證細(xì)胞不能通過但培養(yǎng)液及可溶性因子可以通過。每10天更換一次新取大鼠胰島細(xì)胞。
3.檢測胰島素分泌細(xì)胞相關(guān)指標(biāo):通過形態(tài)學(xué)觀察、雙硫腙染色、RT-PCR、免疫熒光染色以及葡萄糖刺激試驗檢測誘導(dǎo)生成的細(xì)胞是否具有胰島素分泌細(xì)胞的相關(guān)功能。
結(jié)果:
1.形態(tài)學(xué)觀察及DTZ染色:誘導(dǎo)培養(yǎng)后,實驗組及對照組1細(xì)胞逐漸聚集生長,約14天左右開始出現(xiàn)大小不一的細(xì)胞團。第20天時每個實驗組Transwe
17、ll培養(yǎng)體系及對照組1各有20~30個細(xì)胞團,形態(tài)不規(guī)則。富含鋅離子的細(xì)胞團經(jīng)DTZ染色后呈棕紅色,其余細(xì)胞不著色。對照組2及對照組3未出現(xiàn)細(xì)胞團,細(xì)胞不著色。
2.RT-PCR檢測PDX-1表達:實驗組及對照組1誘導(dǎo)后的細(xì)胞從第8天開始表達PDX-1蛋白,并且從第8天至第20天表達逐漸增強。對照組2及對照組3未見PDX-1表達。
3.葡萄糖刺激胰島素釋放試驗:實驗組及對照組1細(xì)胞誘導(dǎo)培養(yǎng)第4、8、12、16
18、、20天時,高糖刺激后可檢測到胰島素分泌,說明誘導(dǎo)后的細(xì)胞對葡萄糖刺激有反應(yīng),實驗組和對照組1細(xì)胞誘導(dǎo)第8天時有微量胰島素分泌,且實驗組高于對照組(P<0.05);實驗組和對照組1從第12天開始胰島素分泌明顯增加(第12天和第8天比,P<0.05),持續(xù)至第20天,第8天至第20天實驗組胰島素分泌量均大于對照組,組內(nèi)第12天與第16、20天相比差異無統(tǒng)計學(xué)意義。對照組2,對照組3培養(yǎng)上清中未測到胰島素分泌。證明實驗組分泌胰島素最多,對葡
19、萄糖刺激反應(yīng)最大,且實驗組早于其他組別產(chǎn)生胰島素分泌,差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
4.免疫熒光染色:實驗組及對照組1誘導(dǎo)后第20天的細(xì)胞表達胰島素(綠色熒光)、C肽(紅色熒光)。對照組2、3細(xì)胞不表達上述各種蛋白。
結(jié)論:
1.NOD-iPSCs能夠在體外誘導(dǎo)生成類似體內(nèi)的胰島素分泌細(xì)胞,對高糖刺激有反應(yīng),具有儲存分泌胰島素的功能。
2.大鼠胰島細(xì)胞能分泌某些可溶性因子通過共培養(yǎng)體系加速分
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