GGTA1敲除豬以及低免疫原性人多能干細胞的研究.pdf

1、本文主要從以下幾個部分進行論述：
　　第一部分 GGTA1敲除豬的研究
　　面臨器官移植供體短缺的現(xiàn)狀，異種移植是一種可行的替代方案。大量研究證明豬是合適的異種移植供體。使用豬進行異種移植仍然需要克服許多免疫排斥障礙，包括超急性免疫排斥反應(HAR)，急性體液異種排斥反應(AHXR)，急性細胞排斥反應(ACR)，凝血功能異常，慢性排斥反應(CR)和炎癥反應等?；谙嚓P致病機理的研究，研究人員認為制備基因修飾豬是克服異種移植免

2、疫排斥障礙的有效措施。目前功能正常的豬多能干細胞系仍然沒有建立，而基于同源重組進行的基因修飾在豬體細胞中效率較低，嚴重制約了相關研究的進展。最近幾年出現(xiàn)了多種高效的基因定點修飾工具，包括鋅指核酶(ZFN)，轉(zhuǎn)錄激活因子樣效應物核酸酶(TALEN)以及CRISPR/Cas9。這些技術被成功地應用于各種模式生物中，我們也建立了基于ZFN和TALEN的豬基因修飾系統(tǒng)。
　　我們首先使用ZFN制備GGTA1 KO(GTKO)豬，然后在GT

3、KO豬細胞中使用TALEN對豬白細胞抗原(SLAs)相關基因進行修飾。GGTA1參與形成的Gal是引起HAR的主要異種抗原。在進化過程中，GGTA1在人類和舊世界猴中失去功能，導致他們的細胞表面沒有Gal抗原，所以他們血液中存在大量靶向Gal抗原的天然抗體。為了克服HAR障礙，研究人員在豬體細胞上通過同源重組修飾GGTA1并結(jié)合體細胞核移植技術制備GTKO豬，通過異種移植實驗表明GTKO豬可以顯著抑制HAR的發(fā)生。但是這種技術不僅效率很

4、低，而且會引入外源的抗藥基因，無法滿足后續(xù)大量基因修飾的需求。我們將靶向GGTA1編碼區(qū)序列的ZFN質(zhì)粒和抗藥質(zhì)粒通過瞬轉(zhuǎn)手段導入胎豬成纖維細胞中，經(jīng)過藥物篩選獲得了18個單拷貝敲除和4個雙拷貝敲除的細胞克隆，效率分別為23.4％和5.2％。隨后我們將獲得的雙拷貝敲除的細胞作為核供體進行體細胞核移植，產(chǎn)生克隆豬。經(jīng)鑒定，一共獲得3頭GTKO豬。同時我們利用克隆胎兒建立了一個GTKO胎豬成纖維細胞系。通過細胞表面標記鑒定證明GTKO豬的細

5、胞膜上Gal抗原被完全清除。通過殺傷實驗證明GTKO豬的細胞可以在與人血清共培養(yǎng)時不受抗體補體介導的免疫攻擊。在GTKO豬的基礎上，我們通過TALEN技術修飾豬的SLAs，將其中的部分基因替換為人類白細胞抗原(HLAs)中的部分基因。我們設計并驗證了靶向SLA-1和-2的TALEN。同時我們設計并構(gòu)建了相關的Ⅺ載體進行基因替換實驗。通過PCR驗證HLA-A基因成功替代SLA-1，并能在豬細胞中表達。這一策略在異種移植中的效果仍需要使用實

6、驗豬進行進一步的異種移植驗證。
　　第二部分 低免疫原性人多能干細胞的研究
　　人多能干細胞(hPSCs)具有自我更新能力，并可以在一定條件下分化為機體內(nèi)所有的細胞類型。所以研究人員嘗試將hPSCs分化為各種組織細胞，用于移植替換病人身上受損的組織細胞。在人類同種異體組織器官移植的過程中，供受體細胞表面的HLAs不兼容會導致免疫排斥反應。HLAs分為HLAⅠ和HLAⅡ: CD8+T細胞識別HLAⅠ，參與直接靶細胞殺傷作用;C

7、D4+T細胞識別HLAⅡ，分泌大量細胞因子參與調(diào)控免疫反應。我們實驗室的工作重點在于使用定點基因修飾的方法降低hPSCs的免疫原性，以滿足其臨床使用的要求。我們實驗室之前通過對B2M的KO已經(jīng)建立了HLAⅠ缺陷的hPSCs，證明了其免疫原性的降低，同時hPSCs的多能性和自我更新能力都沒有顯著的變化。
　　在本研究中我們使用TALEN對HLAⅡ的關鍵調(diào)控基因CIITA進行KO，從而降低hPSCs及其分化獲得的細胞中的HLAⅡ相關基

8、因的表達。CIITA-/-hPSCs在自我更新和分化能力方面與WT hPSCs無明顯差異。將CIITA-/-hPSCs分化為樹突狀細胞(DCs)后，CD83和CD86等表面蛋白標記物正常表達，但其結(jié)構(gòu)型HLAⅡ表達顯著下降。將CIITA-/-hPSCs分化為成纖維細胞后，在IFN-γ的刺激下誘導型HLAⅡ表達顯著下降。將分化獲得的CIITA-/-成纖維細胞與CD4+T細胞共培養(yǎng)，CD4+T的活化減弱。這些結(jié)果說明CIITA-/-hPSC