非液基脫落細胞學

1、脫落細胞學,病理科,,,,,脫落細胞學,細胞固定的方法常見固定問題的處理體腔液樣本的制備,細胞固定的方法,將細胞標本制作完成后，在細胞濕潤時，立即放入以醇性溶液為主的固定液（95%酒精、無水酒精、甲醇、乙醚酒精液等）內，稱濕固定法。這種方法是目前最好的固定方法，可以完好的保存細胞內的各種結構，對正確認識各種細胞的性質，減少細胞學的誤診有很大的幫助。,細胞固定的方法,此方法在痰涂片、婦科涂片、穿刺物涂片、各種刷片、食道拉網(wǎng)涂片、腫塊印

2、片等水分較少的標本上使用非常方便，但在胸腹水、尿、心包積液、腦脊液等含水量較高的標本制作時，需要一定的技術，才能避免細胞的脫落，這在后面各章節(jié)具體會講。,細胞固定的方法,細胞經(jīng)過濕固定后，應該直接從固定液內拿出放入染色液中，無需水洗或干燥，水洗容易使細胞脫落，干燥會導致細胞褪變，也就是說無論在固定前還是固定后細胞干燥都會導致細胞褪變。,細胞固定的方法,濕固定后的固定液，一定要過濾或更換，防止細胞的脫落和污染。在固定和染色時，最好能將痰與

3、其他液體標本分開處理，盡可能不要使用相同的蘇木素液或使用前過濾，因為痰標本很容易吸附脫落的細胞，造成人為的污染，有時會導致誤診,常見固定問題的處理,1、 細胞褪變：通常是由于涂片在干燥過程中，細胞氧化，導致細胞褪變。解決方法，在半濕狀態(tài)下立即固定。其二，也可能是由于細胞不能及時送檢。解決方法：及時送檢，或在送檢液體內加入福爾馬林（送檢液體：福爾馬林=9：1）。,常見固定問題的處理,2、 細胞掉片：最常見的原因是涂片上

4、水分福爾馬林太多，導致放入酒精時有大量細胞脫落。解決方法，離心后要把試管內的液體全部吸干。其次可能是細胞量太多或玻片不干凈，解決方法，把玻片洗干凈，涂片要薄、均勻。,體腔液樣本的制備,體腔液樣本包括胸水、腹水、心包積液、尿、腎囊腫穿刺液等制作。當送檢標本為尿液時，應該要求患者排空清晨第一次尿液，因為這時的尿液中含鹽量高，非上皮性物質較多。應該選擇第二次以后的中段尿為佳。,體腔液樣本的制備,如果患者有有嚴重的尿道或陰道炎癥，應采用導尿管插

5、管取尿，連續(xù)三天送檢。 根據(jù)送檢標本沉淀物量的多少，區(qū)別對待： 一、制片 1、取液：輕輕的把送檢液體上部倒掉，取下層液體15-50ml二管，放入離心管。 2、轉速2000/分，5分鐘 。,體腔液樣本的制備,3、觀看離心管內沉淀物的量： （1）量少：離心后肉眼只能看到少許沉淀，快速倒去上清液，再加入送檢標本，重復離心，反復多次。最后將上清液倒去，把試管豎直倒立于吸水紙上，用吸水紙

6、吸干管口的水分，然后用吸管吸出沉淀物（濕固定的關鍵就在于如何把沉淀物上的水分去除干凈，過多的水分會導致細胞脫片）。,體腔液樣本的制備,如果沉淀物太少，又沒有多余的標本可以反復離心，或多次離心后細胞量還是很少，可將上清液倒去后，把試管口向上靜置幾秒，試管壁上的液體會流入管底，用吸管反復抽吸這點液體，把管底的細胞全部洗刷到液體里，然后吸出，放在0.5或1ml的尖底離心管內，重新離心，離心完成后，用200微升加樣槍吸取上清液，最后吸出沉淀物。

7、此時，由于離心管較小，底較尖，細胞會非常集中，容易吸出。,體腔液樣本的制備,（2）量多：離心后用吸管吸掉上清液，然后，用吸管吸取沉淀物上層細胞。（3）紅細胞多的標本處理：離心后吸取上層沉淀物，放入酒精冰醋酸液（25%酒精95ml+5ml冰醋酸）內，打勻，再離心沉淀。然后，吸取沉淀物。,體腔液樣本的制備,4、涂片：吸取沉淀物后，滴在載玻片上，可采用二張載玻片對拉法。吸取沉淀物涂片的關鍵：吸取沉淀物內不能帶有水分。涂片的關鍵在于平整，均