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文檔簡介
1、研究目的:
1.觀察RGC-32在單核細胞向巨噬細胞分化以及巨噬細胞極化過程中的表達,探討調(diào)控巨噬細胞RGC-32表達的因素。
2.觀察RGC-32表達對巨噬細胞分泌IL-6、TGF-β、IL-1β和TNF-α等炎癥因子的影響,探討RGC-32調(diào)控巨噬細胞分泌炎癥因子的分子機制。
研究方法:
1.以單核細胞系THP-1細胞為研究對象,分別在轉(zhuǎn)錄水平和蛋白水平檢測THP-1細胞在向巨噬細胞分化及巨噬
2、細胞極化過程中RGC-32的表達
THP-1細胞在含有100ng/ml的PMA培養(yǎng)基中誘導(dǎo)培養(yǎng),48小時后誘導(dǎo)分化為巨噬細胞。THP-1細胞在含100ng/ml的PMA培養(yǎng)基中誘導(dǎo)6小時,然后加入100ng/ml的LPS和20ng/ml的IFN-γ或20ng/ml的IL-4培養(yǎng)42小時后,分別極化為M1型或M2型THP-1巨噬細胞。在單核細胞系向THP-1巨噬細胞誘導(dǎo)的第0、6、12、24和48小時,分別采用熒光定量PCR和w
3、estern-blot檢測RGC-32在巨噬細胞中的表達。取THP-1細胞和THP-1巨噬細胞進行免疫熒光染色,采用熒光顯微鏡觀察RGC-32在巨噬細胞中的表達和定位。提取THP-1巨噬細胞、M1和M2型THP-1巨噬細胞的總RNA和蛋白,分別采用熒光定量PCR和western-blot檢測RGC-32在THP-1巨噬細胞、M1和M2型THP-1巨噬細胞的表達。
2.人CD14+細胞的分離和培養(yǎng),探討單核細胞向巨噬細胞分化及巨
4、噬細胞極化過程中RGC-32的表達
取健康志愿者的外周血、結(jié)腸癌患者的外周血和腹水,密度梯度離心法獲取單個核細胞,采用CD14+磁珠陽性篩選獲得外周血單核細胞或CD14+腫瘤相關(guān)巨噬細胞(tumor associated macrophages,TAMs)。純化后的外周血單核細胞在含有100ng/ml的M-CSF和10%胎牛血清的培養(yǎng)基中誘導(dǎo)培養(yǎng)。誘導(dǎo)7天分化為巨噬細胞,加入LPS和IFN-γ繼續(xù)培養(yǎng)2天,極化為M1型巨噬細胞
5、,而巨噬細胞加入IL-4繼續(xù)培養(yǎng)2天,極化為M2型巨噬細胞。采用熒光定量PCR法檢測單核細胞向巨噬細胞分化及巨噬細胞極化過程中RGC-32 mRNA的表達水平。
3.以單核細胞系THP-1細胞為研究對象,探討在巨噬細胞極化過程中調(diào)控RGC-32的因子
分別采用標準濃度的LPS配合梯度濃度的IFN-γ或標準濃度的IFN-γ配合梯度濃度的LPS誘導(dǎo)THP-1細胞系極化為M1型THP-1巨噬細胞,采用梯度濃度的IL-4誘導(dǎo)
6、THP-1細胞極化為M2型THP-1巨噬細胞,熒光定量PCR法檢測RGC-32 mRNA的表達水平,以確定在巨噬細胞極化過程中LPS、IFN-γ和IL-4對RGC-32表達的影響。
4.以單核細胞系THP-1細胞為研究對象,采用siRNA和逆轉(zhuǎn)錄病毒轉(zhuǎn)染技術(shù)沉默和過表達THP-1細胞中RGC-32
以HiPerFect Transfection為載體轉(zhuǎn)染siRNA干擾THP-1細胞中RGC-32的表達。取THP-1細
7、胞經(jīng)PBS洗滌后,加入無血清RPMI1640培養(yǎng)基。將細胞分為陰性載體對照組1、陰性載體對照組2和干擾組,分別加入HiPerFect Transfection、陰性對照siRNA和RGC-32siRNA,孵育12小時后,加入100ng/ml的PMA,繼續(xù)培養(yǎng)48小時后收集細胞,提取總蛋白,用western-blot檢測不同實驗組中RGC-32蛋白的表達水平,計算RGC-32的沉默效率。
逆轉(zhuǎn)錄病毒載體轉(zhuǎn)染THP-1細胞過表達R
8、GC-32。取THP-1細胞經(jīng)PBS洗滌后,將含有pBMN-GFP和pBMN-GFP-RGC-32上清液加入至THP-1細胞的培養(yǎng)體系中,逆轉(zhuǎn)錄病毒感染THP-1細胞。感染THP-1細胞后經(jīng)100ng/ml的PMA處理48小時,收集細胞并提取總蛋白,用western-blot檢測不同實驗組中RGC-32蛋白的表達水平。
5.RGC-32沉默或過表達對巨噬細胞細胞因子mRNA的表達和分泌的影響
PMA誘導(dǎo)沉默和過表達R
9、GC-32的THP-1細胞48小時后分化為巨噬細胞,收集細胞并提取總RNA,用熒光定量PCR檢測巨噬細胞IL-1β、IL-6、TNF-α和TGF-β mRNA的表達水平。分化的巨噬細胞用PBS洗3次,繼續(xù)培養(yǎng)48小時,收集細胞培養(yǎng)上清,高速離心后采用ELISA檢測培養(yǎng)上清中細胞因子IL-1β、IL-6、TNF-α和TGF-β的濃度。
6.探討RGC-32調(diào)控巨噬細胞分泌細胞因子IL-6的分子機制
采用P13K抑制劑L
10、Y294002或?qū)φ誅MSO預(yù)處理siRGC-32和siRNA的THP-1細胞60min,PBS洗滌后,采用PMA刺激48小時誘導(dǎo)分化為巨噬細胞。PBS洗3次,繼續(xù)培養(yǎng)48h,收集細胞培養(yǎng)上清,高速離心后采用ELISA檢測培養(yǎng)上清中細胞因子IL-1β、IL-6、TNF-α和TGF-β的分泌水平。分別收集siRGC-32和siRNA的巨噬細胞提取總蛋白后,采用western-blot技術(shù)檢測AKT磷酸化蛋白水平。
結(jié)果:
11、 1.RGC-32在單核細胞向巨噬細胞分化過程中呈誘導(dǎo)性表達,巨噬細胞向M1型巨噬細胞極化過程中RGC-32表達下調(diào),向M2型極化過程中表達上調(diào)
熒光定量PCR和western-blot結(jié)果顯示,THP-1細胞向THP-1巨噬細胞分化過程中,RGC-32呈誘導(dǎo)性表達。免疫熒光檢測顯示,RGC-32表達于THP-1細胞和THP-1巨噬細胞的細胞漿,且RGC-32在THP-1巨噬細胞表達的熒光強度明顯高于THP-1細胞。THP-
12、1巨噬細胞經(jīng)LPS和IFN-γ刺激極化為M1型THP-1巨噬細胞,RGC-32的表達顯著地降低。而巨噬細胞經(jīng)IL-4刺激極化為M2型THP-1巨噬細胞,RGC-32的表達上調(diào)。人單核細胞向巨噬細胞分化及巨噬細胞極化過程中RGC-32的表達趨勢與單核細胞系一致。
2.在M1型巨噬細胞中,LPS抑制RGC-32表達,而在M2型巨噬細胞中I L-4促進RGC-32的表達
采用濃度梯度的IFN-γ與標準的LPS誘導(dǎo)巨噬細胞向
13、M1極化,結(jié)果顯示RGC-32mRNA的表達水平在各組之間無顯著差異。采用濃度梯度的LPS與標準的IFN-γ誘導(dǎo)巨噬細胞極化,隨著LPS濃度的增高,RGC-32 mRNA的表達水平逐漸降低。利用濃度梯度的IL-4誘導(dǎo)巨噬細胞向M2極化,結(jié)果顯示隨著IL-4濃度的升高,RGC-32 mRNA的表達水平逐漸增高。
3.在TAMs中RGC-32的表達受腫瘤微環(huán)境中M-GSF和IL-4所調(diào)控
TAMs起源于外周血單核細胞,被
14、腫瘤細胞和基質(zhì)細胞募集到腫瘤部位。磁珠分選分離轉(zhuǎn)移性結(jié)腸癌腹水中CD14+ TAMs,采用熒光定量PCR檢測RGC-32在TAMs中的表達較單核細胞明顯增高。這提示由腫瘤釋放的細胞因子可能參與上調(diào)RGC-32表達。我們應(yīng)用M-CSF和IL-4特異性抗體封閉轉(zhuǎn)移性腹水中M-CSF和IL-4,然后將封閉后腹水加入到單核細胞培養(yǎng)體系中,結(jié)果顯示RGC-32的表達明顯降低。
4.以HiPerFect Transfection為載體轉(zhuǎn)染
15、siRNA干擾或逆轉(zhuǎn)錄病毒感染能有效地沉默或過表達THP-1巨噬細胞中RGC-32的表達
以HiPerFect Transfection為載體轉(zhuǎn)染siRNA干擾THP-1細胞,然后誘導(dǎo)THP-1細胞分化為巨噬細胞,檢測干擾RGC-32表達效率。結(jié)果顯示,siRGC-32能有效干擾巨噬細胞RGC-32蛋白的表達。逆轉(zhuǎn)錄病毒感染THP-1細胞,誘導(dǎo)THP-1細胞分化為巨噬細胞,采用western-blot檢測RGC-32過表達的效
16、率。結(jié)果顯示,在巨噬細胞中逆轉(zhuǎn)錄病毒感染能有效地過表達RGC-32。
5.RGC-32可抑制巨噬細胞分泌IL-6,促進TGF-β的產(chǎn)生
siRGC-32及對照siRNA轉(zhuǎn)染巨噬細胞,提取細胞總RNA和收集培養(yǎng)上清,分別采用熒光定量PCR和ELISA檢測巨噬細胞表達和分泌IL-6、TGF-β、IL-1β和TNF-α的水平。結(jié)果顯示,RGC-32干擾可促進巨噬細胞IL-6,抑制TGF-β的表達和分泌,但不影響IL-1β和
17、TNF-α的表達和分泌。提取過表達RGC-32的巨噬細胞及對照巨噬細胞總RNA和收集細胞培養(yǎng)上清,結(jié)果顯示RGC-32的表達可抑制巨噬細胞IL-6,促進TGF-β的表達和分泌,但不影響IL-1β和TNF-α。
6.RGC-32通過抑制PI-3K信號通路從而促進巨噬細胞IL-6的分泌
PI-3K信號通路參與調(diào)節(jié)IL-6的分泌。分別在0、12、24和48小時收集PMA誘導(dǎo)的THP-1細胞,提取總蛋白,western-bl
18、ot檢測到磷酸化的AKT顯著增加,48小時后達到峰值,而總AKT沒有變化。采用LY294002預(yù)處理THP-1細胞,PMA誘導(dǎo)THP-1細胞分化為THP-1巨噬細胞,ELISA檢測LY294002顯著地抑制巨噬細胞分泌IL-6,對巨噬細胞分泌TGF-β無顯著影響。分別比較LY294002預(yù)處理siRGC-32和對照siRNA的巨噬細胞,兩者分泌IL-6的水平無顯著差異。除此之外,western-blot檢測到siRGC-32的巨噬細胞A
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