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文檔簡介
1、臍血是造血干/祖細胞的一個重要來源,可用于臨床移植來恢復患者的髓系造血功能。臍血采集后至進入臨床應用前,需要優(yōu)良的冷凍技術來保持造血干細胞的活性與特征。目前,除了傳統(tǒng)的慢速凍存法外,玻璃化法逐漸成為一種頗具應用前景的低溫保存技術,而良好的干細胞低溫保存方案不僅要保證一定的細胞活率,同時要維持干細胞的增殖及分化能力。 本實驗室在前期的研究中篩選出聯(lián)合玻璃化保護劑配方,并對臍血來源的造血干/祖細胞進行了低溫保存。為了評價該玻璃化冷凍
2、方案的效果,本文首先用臺盼藍拒染法檢測凍后細胞活率,并用流式細胞術測定CD34+細胞的百分含量,再對凍后的細胞進行短期的靜態(tài)培養(yǎng)和長期的集落培養(yǎng),綜合考查凍后細胞的回收率與生物學特征。其次,由于導入過程是細胞發(fā)生損傷的主要環(huán)節(jié),繼而又對導入過程平衡時間進行了優(yōu)化設計。實驗方法主要采用顯微攝像系統(tǒng)拍攝細胞照片,對導入過程不同時刻的細胞體積進行統(tǒng)計分析,并結(jié)合細胞活率的測定,確定適宜的導入平衡時間。 結(jié)果表明:玻璃化冷凍復蘇后,單個
3、有核細胞平均回收率可達到81.5±1.7%,而傳統(tǒng)的慢速凍存法,單個有核細胞回收率僅為74.7±2.6%,兩者存在顯著性差異。慢速凍存組CD34+細胞的回收率為52.3%,略高于玻璃化凍存組49.7%,但兩者無顯著性差異。雖然,CD34+細胞的回收率無顯著差異。原代細胞,玻璃化凍后細胞和慢速冷凍后細胞在72小時內(nèi)的生長狀態(tài)良好,擴增倍數(shù)分別為2.7,2.3和1.9倍。各組細胞進行14天集落培養(yǎng),均可形成典型的BFU-E,CFU-GM和C
4、FU-GEMM集落,各實驗組無顯著性差異,玻璃化凍存組的集落回收率可達到90%以上。 優(yōu)化前導入平衡時間為等時間間隔,即每步導入之間均為90s,總時間為450s。細胞的體積皺縮到初始體積的35%以下,并無法有效恢復。細胞活率為88.1±3.0%。優(yōu)化設計的平衡時間為前短后長的非等平衡時間間隔,即180s,180s,90s,90s和60s,總時間為600s。細胞的體積恢復至初始體積的63%,細胞活率為95.4±0.4%,具有顯著提
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