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文檔簡介
1、目的:應用酵母雙雜交法檢測乙型肝炎病毒(HBV)X蛋白(HBx)與hDaxx的相互作用,并初步探討其相互作用后對細胞凋亡的影響,為進一步研究HBx在HBV慢性感染致癌機制中的作用提供一定的實驗依據。 方法: (1)構建酵母菌真核表達載體pGADT7-HBx:根據已知的HBV X基因序列,采用Primer Premier5.0軟件設計一對引物,并分別引入EcoR I與 Xho I酶切位點,PCR擴增X基因;用EcoRI和
2、Xho I分別雙酶切PCR產物和質粒pGADT7,分別純化回收酶切產物,T4連接酶連接后,轉化大腸桿菌DH5α,篩選陽性克隆。對重組質粒進行酶切及測序鑒定。 (2)構建酵母菌真核表達載體pGBKT7-hDaxx:用EcoRI和SalI分別雙酶切質粒pGBDU-C1/hDaxx和pGBKT7,分別純化回收酶切產物,T4連接酶連接后,轉化大腸桿菌DH5α,篩選到陽性克隆后,對重組質粒行酶切鑒定。 (3)酵母雙雜交檢測HB
3、x與hDaxx的相互作用:將酵母菌真核表達載體及酵母菌陰性陽性對照質粒分4組轉化酵母菌AH109,A組為pGADT7和pGBKT7、B組為pGADT7-HBx和pGBKT7-hDaxx、C組為pGADT7-T和pGBKT7-Lam、D組為pGADT7-T和pGBKT7-p53,將轉化菌落接種于SD/-Trp-Leu(二缺)固體平板,30℃培養(yǎng)2~4d。將單個菌落接種于SD/-Trp-Leu-His(三缺)和SD/-Trp-Leu-His
4、-Ade(四缺)平板,30℃培養(yǎng)2~4d。裂解酵母菌,提取蛋白,經SDS-PAGE、Western blot檢測hDaxx和HBx在酵母中的表達。 (4)流式細胞術檢測細胞凋亡:將HBV X基因穩(wěn)定轉染入HepG2細胞(即HepG2X),再瞬時轉染15μg、30μg和 45μg pcDAN3.1-hDaxx,以pcDNA3.1(+)轉染HepG2X組和HepG2X組分別作為對照。用10mmol/L的5-氟尿嘧啶(5-FU) 處
5、理36h后分別收集各組細胞,經75%的乙醇4℃固定過夜,PI染色后,用流式細胞儀檢測各組細胞的凋亡率。用統(tǒng)計軟件SPSS13.0對實驗數據進行LSD-t檢驗分析。 結果: (1)PCR擴增HBV X基因片段(465bp),將X基因克隆至pGADT7載體上,經雙酶切及測序分析,所克隆的目的片段與已知的X基因序列及GeneBank上公布的HBV X基因(Pubmed NC_U95551)序列完全一致。 (2)將p
6、GBDU-C1/hDaxx上的hDaxx基因片段亞克隆至pGBKT7載體上,經雙酶切分析,得約2.2kb大小的hDaxx基因片段,與預期值大小一致。 (3)分4組轉化的酵母菌AH109在二缺陷平板上均可長出白色菌落,但僅有B、D兩組菌可以在三缺和四缺平板上生長,選取B組四缺陷平板上單個菌落,提取酵母蛋白, Western blot檢測到hDaxx和HBx在同一株酵母菌株中均有表達。 (4)將X基因穩(wěn)定轉染入HepG2
7、細胞,Western blot檢測到HBx在HepG2X細胞中的表達。經流式細胞術檢測,HepG2細胞用5-FU處理后凋亡率明顯高于未經5-FU處理的細胞組,結果具有顯著性差異(P<0.01);HepG2X組細胞凋亡率明顯低于空細胞組,結果具有顯著性差異(P<0.01);而轉染pcDAN3.1-hDaxx后,細胞凋亡率進一步降低,但與轉染入的pcDAN3.1-hDaxx量沒有劑量依賴關系。 結論: (1)成功地構建了p
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